{"id":8722,"date":"2024-08-19T13:24:21","date_gmt":"2024-08-19T17:24:21","guid":{"rendered":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/?p=8722"},"modified":"2026-04-02T08:56:28","modified_gmt":"2026-04-02T12:56:28","slug":"maladies","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/sante-bien-etrecomportement-et-alimentation\/maladies","title":{"rendered":"Maladies"},"content":{"rendered":"
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Source:<\/em> Ces informations sont une gracieuset\u00e9 du Dr Corina Lupu M.V. de L’h\u00f4pital v\u00e9t\u00e9rinaire pour oiseaux et animaux exotiques 6090 Sherbrooke ouest,Montr\u00e9al,Qu\u00e9bec H4R 1Y1 http:\/\/www.birdandexoticvet.com\/<\/a><\/p>\n

Maladies du syst\u00e8me digestif :<\/strong>
\nAvalure ou Boulimie
\nL’oiseau mange sans arr\u00eat maigri tr\u00e8s vite, le plumage est h\u00e9riss\u00e9.
\nCauses : Sevrage pr\u00e9matur\u00e9. Parasites (poux rouges).<\/p>\n

H\u00e9patite<\/strong>
\nL’oiseau atteint d’h\u00e9patite est somnolent, triste, le plumage en boule (par moments).
\nSelon les cas perte d’app\u00e9tit ou boulimie. Il a g\u00e9n\u00e9ralement la diarrh\u00e9e.
\nIl arrive parfois qu’il \u00e9prouve de la peine \u00e0 respirer \u00e0 cause de l’hypertrophie du foie qui comprime les autres organes.
\nCes sympt\u00f4mes peuvent \u00eatre accompagn\u00e9s d’une ent\u00e9rite.
\n\u00c9volution lente mais grave et souvent mortelles.
\nCauses : Alimentation trop riche en graisse. (Arachide, tournesol etc. )<\/p>\n

Ent\u00e9rite<\/strong>
\nL’oiseau a la diarrh\u00e9e et des douleurs abdominales.
\nLes plumes situ\u00e9es sur le pourtour du cloaque sont souill\u00e9es et celui-ci est g\u00e9n\u00e9ralement enflamm\u00e9 de couleur tr\u00e8s rouge.
\nPr\u00e9sence possible de sang dans les fientes.
\nL’oiseau se tient en boules, son abdomen est congestionn\u00e9, violac\u00e9.
\nIl boit beaucoup et maigrit tr\u00e8s vite. L’ent\u00e9rite accompagne souvent l’H\u00e9patite.
\nCauses : Ingestion de graines souill\u00e9es ou ferment\u00e9es.
\nTrop de verdure ou trop de p\u00e2t\u00e9e aux \u0153ufs.<\/p>\n

Maladies du syst\u00e8me respiratoire :<\/strong>
\nAspergillose
\nL’oiseau respire mal, il ne se nourrit plus et vomit parfois.
\nIl maigrit progressivement, son plumage devient terne. Il peut avoir la diarrh\u00e9e.
\nCes sympt\u00f4mes ne sont pas caract\u00e9ristiques et le diagnostic pr\u00e9cis ne s’\u00e9tablit qu’\u00e0 l’autopsie.
\n\u00c9volution lente vers la mort.
\nCauses : Champignon blanch\u00e2tre (Aspergillus fumigations) qui se d\u00e9veloppe sur les poumons et sacs a\u00e9riens.
\nIngestion de graines souill\u00e9es sur lesquels s’est d\u00e9velopp\u00e9 ce champignon.<\/p>\n

Maladies respiratoires \u00e0 mycoplasmes<\/strong>
\nL’oiseau atteint se gratte constamment la t\u00eate avec sa patte ou contre un perchoir.
\nSa respiration est bruyante et accompagn\u00e9e de petits r\u00e2les brefs.
\n\u00c9coulement nasal et abc\u00e8s aux yeux peuvent appara\u00eetre.
\nLes paupi\u00e8res peuvent \u00eatre coll\u00e9es par le pus s\u00e9ch\u00e9.
\n\u00c9volution rapide et mortelle.
\nCauses : Germe interm\u00e9diaire entre le virus et le microbe, ou P.P.L.O.
\nMaladie contagieuse.<\/p>\n

Maladies parasitaires<\/strong>
\nAcariase
\nRespiration difficile accompagn\u00e9e de l\u00e9gers r\u00e2les et de mouvement brusque de la t\u00eate.
\n\u00c9volution lente.
\nCauses : Acarien qui vit dans la trach\u00e9e, dans les sacs a\u00e9riens et les poumons. Il se nourrit du sang de son \u00f4te.<\/p>\n

Candidose ou muguet<\/strong>
\nApparition de taches blanch\u00e2tres dans la cavit\u00e9 buccale comme de la moisissure.
\nL’oiseau est en boule, somnolent et ne mange plus, il peut avoir la diarrh\u00e9e.
\nPerte de poids.
\nCauses : Champignon qui se d\u00e9veloppe dans la cavit\u00e9 buccale, qui peut atteindre le jabot.
\nDisparition apr\u00e8s traitement aux antibiotiques.<\/p>\n

Vers intestinaux<\/strong>
\nL’oiseau perd du poids rapidement. Vol moins puissant. Boulimie. Torticolis.<\/p>\n

Poux gris<\/strong>
\nD\u00e9mangeaisons, excitations. Femelle qui ne garde pas le nid.
\nPlumes neuves d\u00e9t\u00e9rior\u00e9es.
\nCauses : Parasites non dangereux qui se nourrissent des d\u00e9bris de peau et de plumes.
\nLes poux gris vivent sur les oiseaux.<\/p>\n

Poux rouges<\/strong>
\nD\u00e9mangeaisons. La femelle quitte le nid la nuit.
\nLes jeunes sont affaiblis et victime d’an\u00e9mie graves et mortelles.
\nCauses : Acariens qui se nourrissent du sang de leurs h\u00f4tes.
\nContrairement aux poux gris les poux rouges ne vivent pas sur leurs h\u00f4tes mais se cachent la journ\u00e9e dans tous les interstices des cages ou voli\u00e8res. Ils ne sont actifs que la nuit.<\/p>\n

Gale des pattes<\/strong>
\nD\u00e9collement des \u00e9cailles des pattes d\u00fb \u00e0 la formation d’une mati\u00e8re jaun\u00e2tre.
\nGonflement des pattes.
\nApparition de cro\u00fbtes au niveau des cuisses qui perdent leur plumes.
\nCauses : Acariens.<\/p>\n

Gale des plumes<\/strong>
\nAssez rare.
\nOn peut observer au niveau des plumes un manchon blanch\u00e2tre.
\nLes plumes se cassent alors \u00e0 leur base.
\nCauses : Acariens.<\/p>\n

Gale du bec et des narines<\/strong>
\nTaches gris\u00e2tres et de cro\u00fbtes au niveau du bec, des narines et autour des yeux.
\nLe bec lorsqu’il est tr\u00e8s atteint se met \u00e0 pousser exag\u00e9r\u00e9ment et prend un aspect poreux.
\nL’oiseau perd du poids car il \u00e0 des difficult\u00e9 pour se nourrir.
\nCauses : Acariens.<\/p>\n

Maladies du syst\u00e8me nerveux :<\/strong>
\n\u00c9pilepsie
\nPlumes h\u00e9riss\u00e9es. Convulsion.
\nL’oiseau se met \u00e0 battre des ailes et tombe au fond de sa cage ou de sa voli\u00e8re.
\nDeux, trois crises peuvent pr\u00e9c\u00e9der la mort.
\nCauses : Frayeur ou traumatisme entra\u00eenant une congestion c\u00e9r\u00e9brale.
\nNourriture mal \u00e9quilibr\u00e9e trop riche.
\nAn\u00e9mie.<\/p>\n

Maladies infectieuses : <\/strong>(voir plus bas pour description plus d\u00e9taill\u00e9e)<\/em><\/p>\n<\/div>\n

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Salmonelloses<\/strong>
\nDiarrh\u00e9e verd\u00e2tre. Manque d’app\u00e9tit. Perte de poids rapide.
\nAffaiblissement. Vomissements parfois.
\n\u00c9volution fatale en 5 jours pr\u00e9c\u00e9d\u00e9e de convulsions.
\nCauses : Germe – Salmonelles.<\/div>\n
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Colibacillose<\/strong>
\nDiarrh\u00e9e verd\u00e2tre. Dyspn\u00e9e. Somnolence. Manque d’app\u00e9tit.
\nPerte de poids rapide. Vomissements.
\n\u00c9volution fatale en 1 \u00e0 2 jours.
\nCauses : Germe – Colibacilles pathog\u00e8nes
\npr\u00e9sents dans l’intestin qui deviennent dangereux en cas d’affaiblissement ou d’une autre maladie.<\/div>\n
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Maladie de Newcastle<\/strong>
\nAffaiblissement. Somnolence. Troubles respiratoires. Diarrh\u00e9e.
\nTroubles nerveux (renversement de la t\u00eate et du cou, convulsions, perte d’\u00e9quilibre).
\nCauses : Virus… Il existe un vaccin pr\u00e9ventif \/ Maladie incurableP.D.D. = Proventricular Dilatation Disease<\/strong>
\nOiseau triste. Vomissements constants ou intermittents.
\nNourriture non dig\u00e9r\u00e9e dans les fientes.
\nDiarrh\u00e9e. L’oiseau peut tomber de son perchoir.
\nDans certains cas l’oiseau affect\u00e9 peut d\u00e9velopper des signes de syst\u00e8me nerveux en l’absence d’anomalies gastro-intestinales.
\nCauses : Virus qui affecte le syst\u00e8me nerveux et produit une dilatation du pro ventricule.P.B.F.D = Psittacine Beak and Feather Disease<\/strong>
\nPerte de poids rapide. Oiseaux triste.
\nLes plumes en d\u00e9veloppement tombent.
\n\u00c9longation et d\u00e9formation du bec.
\n\u00c9volution vers la mort.
\nCauses : Virus – Circoviridae
\nTransmission virale par contact avec les r\u00e9sidus infect\u00e9s, les s\u00e9cr\u00e9tions, la poussi\u00e8re de plume, les mat\u00e9riaux et surfaces infect\u00e9s. Transmissions aussi par l’\u0153uf. Incubation 21 jours \u00e0 18 mois.<\/div>\n
<\/div>\n
Maladie incurable: <\/strong>Psittacose-Ornithose<\/strong><\/div>\n
Diarrh\u00e9e verd\u00e2tre ou gris\u00e2tre. Somnolence. Plumage h\u00e9riss\u00e9. Ailes pendantes.
\nPerte d’app\u00e9tit. Perte de poids rapide. Contagieux pour l’homme.
\nCauses : Germe<\/div>\n<\/div>\n<\/div>\n<\/div>\n<\/div>\n
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Autres maladies :<\/strong><\/div>\n
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Mue fran\u00e7aise<\/strong>
\nTouche les jeunes \u00e0 la sortie du nid, les grandes r\u00e9miges et les rectrices tombent.
\nLes jeunes ne peuvent plus voler et reste dans le fond de la cage ou de la voli\u00e8re.
\nLes jeunes atteints sont g\u00e9n\u00e9ralement issus de la deuxi\u00e8me ou de la troisi\u00e8me couv\u00e9e.
\nCauses : Inconnues, mais les scientifiques pencheraient pour un virus.<\/div>\n
Le stress<\/strong>
\nLe stress n’est pas une maladie mais est pourtant cause de mortalit\u00e9.
\nLes perroquets import\u00e9s ou \u00e9lev\u00e9s par les parents sont plus sujets au stress.
\nIl peut entra\u00eener le picage et la mort.
\nCauses : Le stress peut \u00eatre g\u00e9n\u00e9r\u00e9 sur n’importe quel perroquet apr\u00e8s un changement brutal.<\/div>\n<\/div>\n<\/div>\n<\/div>\n<\/div>\n
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Les principales maladies infectieuses<\/h2>\n
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Les perroquets peuvent attraper de nombreuses maladies \u00e0 travers des bact\u00e9ries, des virus, des champignons et des parasites. Ils partagent certaines d\u2019entre elles avec d\u2019autres oiseaux, d\u2019autres sont en revanche propres aux perroquets , tandis que d\u2019autres sont transmissibles \u00e0 l\u2019humain. Dans certains cas, ce sont les perroquets d\u2019importations qui ont introduit ces maladies dans notre pays. Voici les principales maladies :<\/p>\n

\u2022 Psittacose ou chlamydiose :<\/strong> elle est certainement la maladie des perroquets la plus redout\u00e9e, car il s\u2019agit d\u2019une zoonose, donc transmissible \u00e0 l\u2019humain chez qui elle peut provoquer des pneumonies. Une telle \u00e9ventualit\u00e9 est peu probable, mais le risque de contagion impose l\u2019examen de tous les perroquets r\u00e9cemment acquis. Les sympt\u00f4mes chez l\u2019oiseau sont la diarrh\u00e9e, la conjonctivite, les difficult\u00e9s respiratoires, les sympt\u00f4mes nerveux, l\u2019anorexie et les vomissements. Dans de nombreux cas l\u2019infection est muette et le perroquet peut \u00eatre un porteur sain de la maladie. Le diagnostic est \u00e9tabli en laboratoire, \u00e0 travers des tests sp\u00e9cifiques par un \u00e9chantillon des f\u00e8ces ou d\u2019apr\u00e8s le titrage des anticorps pr\u00e9sents dans le sang. Le traitement consiste \u00e0 administrer de la t\u00e9tracycline \u00e0 travers a nourriture ou dans l\u2019eau sur une p\u00e9riode de 30 \u00e0 45 jours.<\/p>\n

\u2022 Salmonellose et colibacillose :<\/strong> Comme beaucoup d\u2019autres animaux, les perroquets peuvent contracter la salmonellose, une maladie capable d\u2019\u00e9voluer vers une forme aigu\u00eb (caract\u00e9ris\u00e9e par une diarrh\u00e9e, une anorexie, un abattement et la mort) ou chronique, caract\u00e9ris\u00e9e par de l\u2019arthrite, des sympt\u00f4mes li\u00e9s au syst\u00e8me nerveux central et des l\u00e9sions h\u00e9patiques. Comme la salmonellose, la colibacillose est une maladie bact\u00e9rienne, mais ses sympt\u00f4mes sont plus vari\u00e9s, (gastro-ent\u00e9rite, sympt\u00f4mes nerveux, st\u00e9rilit\u00e9) car l\u2019agent \u00e9tiologique peut atteindre diff\u00e9rents organes de l\u2019oiseau. Ces bact\u00e9ries peuvent infecter l\u2019\u0153uf, directement dans l\u2019ovaire ou apr\u00e8s la ponte, causant ainsi la mort de l\u2019embryon d\u00e8s les premiers jours de sa vie. L\u2019antibiogramme permet de d\u00e9terminer l\u2019antibiotique le plus adapt\u00e9 pour traiter le perroquet malade.<\/p>\n

\u2022 Proventriculite : ou PPD<\/strong> frappe souvent les Perruches ondul\u00e9es, les Ins\u00e9parables, les Calopsittes et les Perruches \u00e0 collier, mais elle s\u2019attaque rarement aux autres esp\u00e8ces. Les perroquets malades ont toujours de l\u2019app\u00e9tit m\u00eame plus qu\u2019\u00e0 l\u2019habitude, malgr\u00e9 cela ils maigrissent petit \u00e0 petit jusqu\u2019\u00e0 en mourir. On observe souvent dans les f\u00e8ces la pr\u00e9sence d\u2019aliments (en particulier des graines) non dig\u00e9r\u00e9s. Un \u00e9chantillon f\u00e9cal, opportun\u00e9ment color\u00e9, permet de diagnostiquer la pr\u00e9sence de m\u00e9ga-bact\u00e9rie chez les oiseaux malades et donc d\u2019entreprendre un traitement \u00e0 base d\u2019amphot\u00e9ricine B par voie orale pendant au minimum 10 jours.<\/p>\n

\u2022 Maladie de Pacheco :<\/strong> elle est due \u00e0 un virus de l\u2019herp\u00e8s capable de provoquer de graves l\u00e9sions au foie des perroquets infest\u00e9s et de les mener \u00e0 la mort en quelques jours. Les oiseaux touch\u00e9s peuvent pr\u00e9senter des signes de mal-\u00eatre g\u00e9n\u00e9ral et une diarrh\u00e9e de couleur jaun\u00e2tre, mais dans la plupart des cas la mort frappe subitement chez des sujets qui paraissaient en bonne sant\u00e9. Cette maladie est souvent associ\u00e9e \u00e0 l\u2019importation de perroquets d\u2019Am\u00e9rique du sud et provoque un v\u00e9ritable carnage parmi les oiseaux import\u00e9s mais aussi parmi tous ceux qui ont la malchance d\u2019\u00eatre en contact avec eux. Il n\u2019existe malheureusement aucun traitement efficace pour cette maladie. Une mol\u00e9cule utilis\u00e9e dans le traitement des infections herp\u00e9tiques chez l\u2019humain, peut diminuer les possibilit\u00e9s de contagion parmi les oiseaux, mais il ne sert \u00e0 rien pour les sujets d\u00e9j\u00e0 infest\u00e9s.<\/p>\n

\u2022 Maladie du bec et des plumes des Psittacid\u00e9s : <\/strong>aussi appel\u00e9 PBFD<\/strong> et qui est due \u00e0 un tout petit virus qui provoquent chez les oiseaux infect\u00e9s de graves alt\u00e9rations du plumage, donnant \u00e0 l\u2019oiseau un air d\u00e9plum\u00e9. Le bec et les griffes peuvent pousser de fa\u00e7on anormale et se montrer particuli\u00e8rement fragiles. Le PBFD provoque une baisse du syst\u00e8me immunitaire des perroquets, les rendant ainsi particuli\u00e8rement sensibles aux infections m\u00eame les plus banales. La maladie est tr\u00e8s courante chez les Cacato\u00e8s mais elle peut frapper toutes les esp\u00e8ces. Il n\u2019existe aucun traitement pour cette maladie. Le d\u00e9pistage se fait avec des tests par sondes mol\u00e9culaires (PCR) sur des \u00e9chantillons de sang.<\/p>\n

\u2022 Polyomavirus :<\/strong> maladie virale particuli\u00e8rement redout\u00e9e des \u00e9leveurs. Elle touche surtout les jeunes perroquets \u00e9lev\u00e9s \u00e0 la main avant la fin de la p\u00e9riode de sevrage. Les sympt\u00f4mes typiques sont un gosier jamais compl\u00e8tement d\u00e9gag\u00e9, un abattement g\u00e9n\u00e9ral, une diarrh\u00e9e, une anorexie et une h\u00e9morragie sous-cutan\u00e9e. La mort survient en l\u2019espace de 2 \u00e0 3 jours apr\u00e8s l\u2019apparition des premiers sympt\u00f4mes. La maladie se transmet \u00e0 travers les fientes, les s\u00e9cr\u00e9tions nasales et les pellicules des plumes en contaminant la nourriture et l\u2019eau. La maladie peut \u00eatre \u00e9galement transmise par les parents, qui s\u2019av\u00e8rent souvent des porteurs sains du virus. Il n\u2019existe aucun traitement contre cette maladie mais il existe un vaccin. Le diagnostic s\u2019\u00e9tablit par le test de la PCR sur des \u00e9chantillons de sang.<\/p>\n

\u2022 Variole :<\/strong> v\u00e9hicul\u00e9e par une piq\u00fbre d\u2019insecte, elle peut s\u2019attaquer aux perroquets en provoquant une conjonctivite qui peut \u00eatre suivie de la formation de membrane dipht\u00e9rique au niveau des premi\u00e8res voies respiratoires. Les sympt\u00f4mes respiratoires dominent dans cette maladie qui peut d\u00e9boucher sur un taux de mortalit\u00e9 variable, souvent aggrav\u00e9s par des infections bact\u00e9riennes secondaires. On traite les infections avec des antibiotiques \u00e0 large spectre, qui n\u2019ont en revanche aucune utilit\u00e9 contre le virus.<\/p>\n

\u2022 Peste aviaire et maladie de Newcastle:<\/strong> ce sont des maladies d\u2019origine virale, v\u00e9hicul\u00e9es par un orthomixovirus et un paramyxovirus. De telles maladies sont dangereuses pour les volailles au point que la destruction du foyer est obligatoire, peuvent frapper \u00e9galement les Psitaccid\u00e9s qui donnent alors des signes graves de maladies avec des sympt\u00f4mes tr\u00e8s variables (de type respiratoire, digestif ou nerveux) selon la souche virale impliqu\u00e9e. Le diagnostic s\u2019\u00e9tablit une fois le virus isol\u00e9 dans les f\u00e8ces, les tampons cloacaux et le pharynx. Aucun traitement n\u2019existe pour les deux maladies.<\/p>\n

\u2022 Syndrome de la dilatation du proventricule<\/strong> : Il s\u2019agit d\u2019une maladie insidieuse, \u00e0 \u00e9volution chronique, qui a d\u2019abord \u00e9t\u00e9 d\u00e9cel\u00e9e chez les Aras puis chez les autres esp\u00e8ces; elle se caract\u00e9rise par une paralysie progressive du proventricule due selon toute probabilit\u00e9 au virus s\u2019attaquant aux structures nerveuses. La nourriture s\u2019accumule dans l\u2019estomac incapable de se contracter et qui par cons\u00e9quent se dilate. Les perroquets affect\u00e9s r\u00e9gurgitent souvent la nourriture et pr\u00e9sentent une distension de l\u2019abdomen, un amaigrissement et des aliments non dig\u00e9r\u00e9s dans les f\u00e8ces. Le diagnostic, bas\u00e9 sur les sympt\u00f4mes et sur la mise en \u00e9vidence lors d\u2019un examen radiologique de l\u2019augmentation du volume du proventricule. Il n\u2019existe aucun traitement contre cette maladie, si ce n\u2019est que l\u2019administration d\u2019aliments liquides et digestes; seules les infections secondaires sont trait\u00e9es afin de maintenir en vie des sujets malades pendant une p\u00e9riode plus ou moins longue.<\/p>\n

\u2022 Mycose :<\/strong> il n\u2019est pas rare que les perroquets soient frapp\u00e9s au cours de leur vie par une mycose qui sont des infections transmises par diff\u00e9rents champignons. Ces agents infectieux sont opportunistes et profitent de causes comme la malnutrition, le stress continu ou un traitement antibiotique prolong\u00e9 pour frapper. La mycose la plus redout\u00e9e est l\u2019aspergillose, une maladie carct\u00e9ris\u00e9e essentiellement par des sympt\u00f4mes respiratoires et un d\u00e9p\u00e9rissement progressif de l\u2019oiseau malade. Le diagnostic de cette maladie n\u2019est pas simple et se base sur l\u2019association de plusieurs examens (du sang, endoscopique, radiologique, culture). Le traitement pr\u00e9voit des m\u00e9dicaments antimycosiques (fluconazole, ketoconazole, etc.) administr\u00e9s par voie parent\u00e9rale ou par a\u00e9rosol et le traitement antibiotique des infections bact\u00e9riennes concomitantes.<\/p>\n

\u2022 Verminose et parasitose :<\/strong> les infestations de t\u00e9nias, ascarides et capillaires sont les verminoses les plus courantes chez les Psittacid\u00e9s. Les oiseaux atteints maigrissent peu \u00e0 peu, tout en conservant leur app\u00e9tit. Plusieurs sympt\u00f4mes peuvent coexister tels que le vomissement, la diarrh\u00e9e allant m\u00eame jusqu\u2019\u00e0 provoquer la mort, la plupart du temps suite \u00e0 une obstruction intestinale due \u00e0 l\u2019enchev\u00eatrement des vers. Apr\u00e8s avoir d\u00e9termin\u00e9 la nature du parasite, le v\u00e9t\u00e9rinaire se chargera de prescrire le m\u00e9dicament antihelminthique le plus appropri\u00e9. Il est possible de traiter ces infestations \u00e0 l\u2019aide d\u2019insecticides en spray ou en appliquant localement de l\u2019ivermectine.<\/p>\n

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INFLUENZA AVIAIRE<\/strong><\/h3>\n
https:\/\/www.inspection.gc.ca\/fr\/sante-animaux\/animaux-terrestres\/maladies\/declaration-obligatoire\/influenza-aviaire\/plan-specifiquement-lie-aux-risques\/apercu-linfluenza-aviaire<\/a><\/div>\n

2. Aper\u00e7u de l’influenza aviaire<\/strong>
\nL’influenza aviaire (IA) est une virose touchant les oiseaux domestiques et les oiseaux sauvages. Ses signes cliniques plus ou moins graves peuvent passer inaper\u00e7us ou, encore, \u00eatre aigus et entra\u00eener une mortalit\u00e9 \u00e9lev\u00e9e. La gravit\u00e9 de l’atteinte d\u00e9pend de la souche virale et de l’esp\u00e8ce aviaire touch\u00e9e.<\/p>\n

L’IA est tr\u00e8s infectieuse et contagieuse et se caract\u00e9rise par divers syndromes qui peuvent varier de b\u00e9nins (p. ex., affection subclinique ou atteinte respiratoire b\u00e9nigne) \u00e0 graves (p. ex., arr\u00eat de la production d’\u0153ufs ou atteinte aigu\u00eb et g\u00e9n\u00e9ralis\u00e9e mortelle).<\/p>\n

\u00ab La peste aviaire \u00bb a \u00e9t\u00e9 observ\u00e9e et d\u00e9crite pour la premi\u00e8re fois comme une maladie grave de la volaille par Perroncito, en Italie, en 1878. L’origine virale de la peste aviaire a \u00e9t\u00e9 d\u00e9couverte en 1901 par Centanni et Savunozzi, mais ce n’est qu’en 1955 que les agents ont \u00e9t\u00e9 caract\u00e9ris\u00e9s et identifi\u00e9s comme \u00e9tant des virus de l’influenza de type A.<\/p>\n

Depuis 1955, toutes les \u00e9closions d’influenza hautement pathog\u00e8ne (IAHP) ont \u00e9t\u00e9 attribu\u00e9es aux sous-types H5 et H7 du virus. Il a \u00e9t\u00e9 d\u00e9montr\u00e9 \u00e0 maintes reprises que les souches faiblement pathog\u00e8nes de ces sous-types avaient tendance \u00e0 se transformer en souches hautement pathog\u00e8nes apr\u00e8s avoir circul\u00e9 pendant un certain temps au sein d’une population aviaire constitu\u00e9e principalement de galliformes (oiseaux terrestres tels que la poule). Cette situation a incit\u00e9 l’Organisation mondiale de la sant\u00e9 animale (OIE) \u00e0 red\u00e9finir ses exigences en mati\u00e8re de notification de l’influenza aviaire.<\/p>\n

En 1997, on a signal\u00e9 qu’une infection caus\u00e9e par une souche H5N1 hautement pathog\u00e8ne du virus de l’influenza aviaire circulant au sein de populations aviaires de l’Asie du Sud-Est \u00e9tait pass\u00e9e de la volaille \u00e0 l’homme \u00e0 Hong Kong. Parmi les personnes qui \u00e9taient entr\u00e9es en contact \u00e9troit avec des oiseaux malades ou morts, six d’entre elles sont mortes. Au cours des ann\u00e9es suivantes, la souche asiatique H5N1 a \u00e9t\u00e9 associ\u00e9e \u00e0 d’autres \u00e9closions dans des troupeaux de volailles en Asie. \u00c0 la fin de 2002, elle \u00e9tait devenue une menace mondiale. Le virus s’est r\u00e9v\u00e9l\u00e9 hautement pathog\u00e8ne chez diverses esp\u00e8ces, notamment la sauvagine domestique et sauvage (ans\u00e9riformes) et certains mammif\u00e8res carnivores. Au printemps 2006, l’infection caus\u00e9e par la souche asiatique H5N1 s’\u00e9tait propag\u00e9e jusqu’en Europe de l’Ouest et en Afrique, o\u00f9 elle a apparemment \u00e9t\u00e9 introduite par l’interm\u00e9diaire d’oiseaux migrateurs. Depuis janvier 2006, tous les sous-types H5 et H7 doivent, quelle que soit la pathog\u00e9nicit\u00e9 \u00e9tablie lors du diagnostic initial, \u00eatre signal\u00e9s \u00e0 l’OIE.<\/p>\n

2.1 \u00c9tiologie<\/strong>
\nL’IA est caus\u00e9e par diff\u00e9rentes souches du virus et est \u00e9galement connue sous les noms suivants:<\/p>\n

influenza aviaire hautement pathog\u00e8ne (IAHP);
\ninfluenza aviaire \u00e0 d\u00e9claration obligatoire (IADO); et
\npeste aviaire.<\/p>\n

Les agents responsables de l’IA sont des virus de la famille des Orthomyxoviridae. Ce sont des virus \u00e0 acide ribonucl\u00e9ique (ARN) monocat\u00e9naire pl\u00e9omorphes dont l’enveloppe est h\u00e9riss\u00e9e de pointes de glycoprot\u00e9ines sym\u00e9triques ayant des activit\u00e9s h\u00e9magglutinine (H) et neuraminidase (N) qui subissent des variations antig\u00e9niques. Des antig\u00e8nes de surface, connus sous les noms d’antig\u00e8ne h\u00e9magglutinine (AH) et d’antig\u00e8ne neuraminidase (AN), sont \u00e0 la base de l’identit\u00e9 s\u00e9rologique des virus de l’influenza, les lettres \u00ab H \u00bb et \u00ab N \u00bb \u00e9tant utilis\u00e9es avec des chiffres appropri\u00e9s dans la d\u00e9signation du virus, comme pour H5N2.<\/p>\n

Le virus de l’influenza pr\u00e9sente trois types antig\u00e9niques, soit les types A, B et C; le type A comprend actuellement 16 sous-types antig\u00e9niques h\u00e9magglutinine et neuf sous-types neuraminidase. Le seul virus de l’influenza qu’on ait trouv\u00e9 chez des oiseaux est le virus de type A.<\/p>\n

La sp\u00e9cificit\u00e9 du type est d\u00e9termin\u00e9e par la nature antig\u00e9nique de la nucl\u00e9oprot\u00e9ine (NP) et de la matrice (M).<\/p>\n

2.2 Esp\u00e8ces sensibles<\/strong>
\nDe nombreuses esp\u00e8ces aviaires domestiques et sauvages peuvent \u00eatre infect\u00e9es par des virus de l’IA pouvant provoquer ou non la maladie.<\/p>\n

Oiseaux domestiques<\/strong>
\nLes dindons, les poulets et les canards sont les esp\u00e8ces aviaires les plus souvent infect\u00e9es dans des conditions naturelles. Plusieurs autres esp\u00e8ces d’oiseaux peuvent \u00eatre infect\u00e9es par le virus de l’IA, notamment l’autruche, le nandou, l’\u00e9meu, la pintade, l’oie domestique, la caille, le faisan, la perdrix, le mainate religieux, le passereau, les psittacid\u00e9s et la perruche ondul\u00e9e. Il y a tout lieu de penser que les pigeons (columbiformes) sont r\u00e9sistants ou peu r\u00e9ceptifs \u00e0 la maladie et que le virus ne s’y r\u00e9plique pas, mais il se peut que ces oiseaux puissent servir de vecteurs m\u00e9caniques.<\/p>\n

Certains isolats de virus peuvent \u00eatre pathog\u00e8nes pour les dindons et ne pas l’\u00eatre pour les poulets ou les autres esp\u00e8ces aviaires.<\/p>\n

Faune aviaire<\/strong>
\nDans la faune aviaire, on a isol\u00e9 le virus de l’IA chez les esp\u00e8ces suivantes : \u00e9tourneaux, sauvagine, canards colverts et pilets, foulques et perdrix bartavelles. Le virus de l’IA est souvent d\u00e9tect\u00e9 chez des oiseaux de rivage, des oiseaux de mer et de la sauvagine migratrice apparemment en bonne sant\u00e9 partout sur la plan\u00e8te. L’importance \u00e9pid\u00e9miologique de ces \u00e9v\u00e9nements par rapport aux \u00e9closions qui se produisent chez des oiseaux domestiques donne \u00e0 penser que la sauvagine et d’autres oiseaux servent de r\u00e9servoirs aux virus de l’IA.<\/p>\n

Mammif\u00e8res<\/strong>
\nOn sait que les virus de l’influenza de type A causent la maladie chez le cheval (H3 et H7), le porc (H1 et H3), le vison (H3 et H10), la baleine et le phoque commun (H1, H3, H4, H7 et H13). Toutefois, la cible de plusieurs des sous-types de l’influenza de type A s’\u00e9tend \u00e0 d’autres esp\u00e8ces de mammif\u00e8res. On a montr\u00e9 que la souche asiatique H5N1 infecte le chat, le l\u00e9opard, le tigre et la civette. En 2005, on a reconnu des cas d’influenza canine caus\u00e9s par la souche H3N8 aux \u00c9tats-Unis. Par ailleurs, on a isol\u00e9 des souches aviaires et mammaliennes du virus de l’influenza simultan\u00e9ment chez le porc. Le porc peut jouer un r\u00f4le important dans l’\u00e9pid\u00e9miologie de l’infection des dindons par le virus de l’influenza porcine lorsque les deux esp\u00e8ces logent \u00e0 proximit\u00e9. En 2005, des troupeaux de dindons reproducteurs en Ontario, au Manitoba et en Colombie-Britannique, contamin\u00e9s par une souche H3N2 qui circulait dans des porcheries locales, ont enregistr\u00e9 une baisse importante de la production d’\u0153ufs, laquelle ne s’est jamais r\u00e9tablie.<\/p>\n

En 2009, le virus de la grippe humaine pand\u00e9mique H1N1 a \u00e9t\u00e9 isol\u00e9e chez des porcs en Alberta, un \u00e9v\u00e9nement qui a mis en \u00e9vidence la capacit\u00e9 zoonotique du virus et prouv\u00e9 que celui\u00adci pouvait passer de l’homme \u00e0 l’animal; plus tard au cours de la m\u00eame ann\u00e9e, un \u00e9leveur de dindons reproducteurs a enregistr\u00e9 une baisse de sa production d’\u0153ufs qui a \u00e9t\u00e9 associ\u00e9e \u00e0 la souche H1N1 et \u00e0 une possible responsabilit\u00e9 humaine dans la transmission du virus. (Voir le Rapport de notification imm\u00e9diate \u00e0 l’OIE et le rapport de suivi no 1.)<\/p>\n

2.3 R\u00e9partition mondiale<\/strong>
\nDes virus s’apparentant aux isolats des virus de la peste aviaire initialement responsables des taux \u00e9lev\u00e9s de mortalit\u00e9 et de morbidit\u00e9 chez les poulets et d’autres types de volailles et d’oiseaux sont pr\u00e9sents dans la plupart des pays du monde producteurs de volailles. Des \u00e9closions mettant en cause le virus de l’influenza aviaire \u00e0 d\u00e9claration obligatoire hautement pathog\u00e8ne (IADOHP) ont p\u00e9riodiquement \u00e9t\u00e9 signal\u00e9es dans de nombreuses r\u00e9gions du monde, y compris l’Am\u00e9rique du Nord, le Moyen-Orient, l’Extr\u00eame-Orient, l’Europe, l’Australie, l’Angleterre et l’ancienne Union sovi\u00e9tique. Il est clair cependant que la r\u00e9partition des virus de l’IA d\u00e9pend de la r\u00e9partition des esp\u00e8ces aviaires domestiques et sauvages, de l’emplacement des exploitations avicoles, des voies migratoires, de la saison et des syst\u00e8mes de d\u00e9claration des maladies utilis\u00e9s. Il est difficile d’\u00e9tablir avec exactitude les taux de pr\u00e9valence de la maladie compte tenu de l’\u00e9ventail des syst\u00e8mes et des proc\u00e9dures de surveillance utilis\u00e9s.<\/p>\n

Les virus de l’IA sont pr\u00e9sents partout dans le monde. Ces virus sont souvent isol\u00e9s du contenu intestinal d’oiseaux migrateurs et d’oiseaux de rivage apparemment en bonne sant\u00e9 dans plusieurs r\u00e9gions de la plan\u00e8te. Bien qu’il soit difficile de d\u00e9terminer pr\u00e9cis\u00e9ment la distribution et la pr\u00e9valence de l’influenza aviaire, on sait qu’il y a des \u00e9closions sporadiques et occasionnelles de l’IAHP chez les oiseaux domestiques partout dans le monde et qu’il y a eu des \u00e9closions en Australie, au Canada, au Chili, en Angleterre, en France, en Italie, aux Pays-Bas, en Irlande du Nord, en \u00c9cosse, un peu partout en Asie du Sud-Est, aux \u00c9tats-Unis et dans l’ancienne Union sovi\u00e9tique. Depuis 2000, les \u00e9closions d’ IADOHP semblent se produire plus fr\u00e9quemment, la souche H5N1 hautement pathog\u00e8ne a fait des ravages dans un certain nombre de pays d’Asie, d’Europe et d’Afrique et elle a \u00e9t\u00e9 responsable de plusieurs victimes humaines. La pr\u00e9valence de l’ IADOFP (sous-types H5 et H7) est difficile \u00e0 \u00e9valuer \u00e0 cause du manque g\u00e9n\u00e9ralis\u00e9 de surveillance active dans de nombreux pays.<\/p>\n

L’interface de la base de donn\u00e9es mondiale d’information sanitaire (WAHID) r\u00e9unit de l’information sur toutes les \u00e9pizooties qui ont \u00e9t\u00e9 signal\u00e9es \u00e0 l’OIE, y compris les \u00e9closions d’IAFP et d’IAHP depuis 2005, sous le titre \u00ab Notifications imm\u00e9diates et Rapports de suivi \u00bb.<\/p>\n

Au Canada, cinq \u00e9closions se sont produites dans la volaille commerciale jusqu’\u00e0 maintenant:<\/p>\n

F\u00e9vrier 2004 \u2013 IADOHP (H7N3) en Colombie-Britannique
\nNovembre 2005 \u2013 IADOFP (H5N2) en Colombie-Britannique
\nSeptembre 2007 \u2013 IADOHP (H7N3) en Saskatchewan (rapport disponible en anglais seulement)
\nJanvier 2009 \u2013 IADOFP (H5N2) en Colombie-Britannique (rapport disponible en anglais seulement)
\nNovembre 2010 \u2013 IADOFP (H5N2) au Manitoba.
\nLes pays reconnus comme \u00e9tant indemnes de l’influenza aviaire hautement pathog\u00e8ne sont \u00e9num\u00e9r\u00e9s sur le site Web de l’ACIA.<\/p>\n

2.4 \u00c9pid\u00e9miologie<\/strong>
\n2.4.1 P\u00e9riode d’incubation \u2013 P\u00e9riode critique<\/strong>
\nLa p\u00e9riode d’incubation des diverses affections et syndromes caus\u00e9s par les virus de l’IA est tr\u00e8s variable et peut aller de quelques heures chez les oiseaux inocul\u00e9s par voie intraveineuse \u00e0 trois jours chez les oiseaux infect\u00e9s naturellement. La p\u00e9riode d’incubation peut s’\u00e9tendre \u00e0 14 jours dans un troupeau. Toutefois, le Code sanitaire pour les animaux terrestres 2010 de l’OIE recommande une p\u00e9riode de 21 jours comme p\u00e9riode critique pr\u00e9voyant trois cycles de sept jours du virus dans les troupeaux. Cette p\u00e9riode de 21 jours est la p\u00e9riode critique utilis\u00e9e par l’ACIA pour d\u00e9terminer la date la plus r\u00e9cente d’introduction d’un virus durant une enqu\u00eate sur l’origine d’une infection.<\/p>\n

L’apparition des premiers signes cliniques et la dur\u00e9e de l’incubation d\u00e9pendent de la dose de virus et de la virulence de la souche, de la voie d’exposition, de l’esp\u00e8ce touch\u00e9e, des pratiques d’\u00e9levage (sur liti\u00e8re ou en cage) et de la capacit\u00e9 \u00e0 reconna\u00eetre les signes cliniques.<\/p>\n

2.4.2 Persistance dans l’environnement<\/strong>
\nLes virus de l’IA sont relativement sensibles \u00e0 l’inactivation par des solvants lipidiques tels que des d\u00e9tergents. Les virus sont facilement inactiv\u00e9s par la chaleur, des pH extr\u00eames, des conditions non isotoniques et la s\u00e9cheresse. Toutefois, leur infectiosit\u00e9 ainsi que leurs activit\u00e9s h\u00e9magglutinine et neuraminidase peuvent \u00eatre maintenues pendant plusieurs semaines \u00e0 4 \u00b0C. La conservation des virus \u00e0 -70 \u00b0C ou par lyophilisation permet habituellement de maintenir leur infectiosit\u00e9 et d’autres propri\u00e9t\u00e9s biochimiques pendant de longues p\u00e9riodes. Par ailleurs, les activit\u00e9s h\u00e9magglutinine (H) et neuraminidase (N) peuvent \u00eatre conserv\u00e9es m\u00eame si les virus ne sont plus infectieux. Le formald\u00e9hyde et le b\u00eata-propriolactone peuvent \u00eatre utilis\u00e9s pour \u00e9liminer l’infectiosit\u00e9 des virus tout en pr\u00e9servant leurs activit\u00e9s h\u00e9magglutinine (H) et neuraminidase (N). Sur le terrain, les surfaces contamin\u00e9es par l’IA peuvent \u00eatre d\u00e9contamin\u00e9es par la chaleur, des solutions d’hypochlorite de sodium, du formald\u00e9hyde ou des d\u00e9sinfectants commerciaux comme le One-Stroke Environ (ph\u00e9nol) et le Virkon (peroxymonosulfate de potassium). Les virus pathog\u00e8nes de l’influenza peuvent survivre jusqu’\u00e0 105 jours apr\u00e8s l’abattage dans un environnement froid (4 \u00b0C) et humide (p. ex., dans le purin). L’infectiosit\u00e9 des virus subsiste dans les mati\u00e8res f\u00e9cales pendant une p\u00e9riode allant de 30 \u00e0 35 jours \u00e0 4 \u00b0C et pendant sept jours \u00e0 20 \u00b0C. Le virus peut survivre dans la carcasse des volailles pendant quelques jours \u00e0 la temp\u00e9rature ambiante et jusqu’\u00e0 23 jours sous r\u00e9frig\u00e9ration (4 \u00b0C).<\/p>\n

2.4.3 Modes d’introduction et de transmission<\/strong>
\nModes d’introduction<\/strong>
\nLes populations d’oiseaux sauvages, en particulier la sauvagine, servent de r\u00e9servoirs et peuvent \u00eatre la source initiale d’infection chez les oiseaux domestiques qui ont consomm\u00e9 de la nourriture et de l’eau contamin\u00e9es. Il semble \u00e9galement que les virus de l’IA survivent dans une population de canards sauvages en infectant des oiseaux r\u00e9ceptifs \u2013 m\u00eame \u00e0 un faible niveau \u2013 tout au long de l’ann\u00e9e. Pendant la saison de reproduction, un nouveau groupe de canards juv\u00e9niles r\u00e9ceptifs pr\u00e9serve le cycle. Avant que le virus cause la maladie chez la volaille, il doit s’adapter \u00e0 l’esp\u00e8ce. Une fois le virus adapt\u00e9, sa virulence peut se renforcer au fil du temps, par le passage d’en un oiseau \u00e0 un autre chez les galliformes (dans les troupeaux de poulets et de dindons principalement). La maladie est fortement contagieuse; une fois qu’un troupeau est infect\u00e9, on trouve de fortes concentrations virales dans les mati\u00e8res f\u00e9cales (jusqu’\u00e0 16 X 106 virions\/g de mati\u00e8res f\u00e9cales) ainsi que dans les s\u00e9cr\u00e9tions des oiseaux infect\u00e9s. La diss\u00e9mination est ensuite principalement m\u00e9canique et se fait par l’interm\u00e9diaire des \u00eatres humains, la contamination f\u00e9cale \u00e9tant le principal m\u00e9canisme de propagation. L’\u00e9closion d’IAHP survenue en 2004 dans la vall\u00e9e du Fraser montre que le transport de particules virales sur de courtes distances est possible. Cependant, plus de recherches sont n\u00e9cessaires afin de pr\u00e9ciser la possibilit\u00e9 de diss\u00e9mination de la maladie par des particules a\u00e9roport\u00e9es. Chez les oiseaux domestiques, voici quelles sont les sources d’introduction primaire du virus de l’influenza aviaire, par ordre de priorit\u00e9 :<\/p>\n<\/div>\n

    \n
  • les autres volailles infect\u00e9es;<\/li>\n
  • les oiseaux sauvages;<\/li>\n
  • les oiseaux exotiques en captivit\u00e9;<\/li>\n
  • les \u00eatres humains;<\/li>\n
  • les autres animaux.<\/li>\n<\/ul>\n
    Modes de transmission<\/strong>
    \nLe contact direct avec les excr\u00e9tions, en particulier les f\u00e8ces et les s\u00e9cr\u00e9tions respiratoires des volailles et autres oiseaux infect\u00e9s, constitue la principale voie de diss\u00e9mination dans les troupeaux infect\u00e9s. Une fois le virus introduit dans un troupeau d’oiseaux, il passe d’un oiseau \u00e0 l’autre, puis d’un troupeau \u00e0 l’autre. Toutefois, certains virus de l’IA se propagent rapidement dans un troupeau tandis que d’autres le font lentement. Par ailleurs, le m\u00eame virus de l’IA peut se propager diff\u00e9remment chez diff\u00e9rentes esp\u00e8ces d’oiseaux. Le taux de diss\u00e9mination d’un virus de l’IA dans un troupeau de volailles ne d\u00e9pend pas n\u00e9cessairement de la pathog\u00e9nicit\u00e9 du virus. La maladie peut aussi se transmettre par la sauvagine et d’autres oiseaux sauvages, ou par la contamination des aliments ou de l’\u00e9quipement ainsi que par l’interm\u00e9diaire des \u00eatres humains et d’autres moyens m\u00e9caniques. De plus, l’\u00e9valuation de la transmission de la maladie au cours d’\u00e9closions locales se complique en raison de la difficult\u00e9 d’\u00e9tablir une distinction entre la transmission directe et la transmission par un agent interm\u00e9diaire comme des personnes. Selon les r\u00e9sultats des \u00e9tudes sur les oiseaux de rivage et les mouettes, ces oiseaux constituent un important r\u00e9servoir de virus.Des virus de l’IAHP ont \u00e9galement \u00e9t\u00e9 trouv\u00e9s dans le jaune et le blanc des \u0153ufs provenant de poules infect\u00e9es. Quand une poule est infect\u00e9e, le virus de l’IA peut \u00eatre pr\u00e9sent \u00e0 l’int\u00e9rieur des \u0153ufs ou \u00e0 leur surface. La transmission verticale n’est pas exclue, mais il est peu probable que les embryons infect\u00e9s par des souches hautement pathog\u00e8nes du virus puissent survivre ou \u00e9clore. Il est possible que les \u0153ufs contamin\u00e9s, f\u00eal\u00e9s et non trait\u00e9s soient une source d’infection.<\/div>\n
    <\/div>\n
    2.5 Pathogen\u00e8se<\/strong>
    \nChez les galliformes, le processus infectieux d\u00e9bute par l’inhalation ou l’ingestion du virus infectieux. Pour que le virus soit activ\u00e9, il faut que la surface de l’h\u00e9magglutinine soit coup\u00e9e par des enzymes situ\u00e9es dans les cellules de l’h\u00f4te. Ainsi, l’h\u00e9magglutinine du virus de l’IAFP peut \u00eatre coup\u00e9e par des enzymes semblables \u00e0 la trypsine dans les cellules \u00e9pith\u00e9liales des voies respiratoires et intestinales. Par cons\u00e9quent, les infections \u00e0 IAFP se limitent aux voies respiratoires et intestinales. Par ailleurs, l’h\u00e9magglutinine des virus de l’IAHP peut \u00eatre coup\u00e9e par des enzymes de type furine largement r\u00e9pandues, ce qui permet une r\u00e9plication pantropique. Les signes cliniques et la mort sont dus \u00e0 l’arr\u00eat du fonctionnement de multiples organes par les processus suivants : r\u00e9plication directe du virus dans les cellules, les tissus et les organes, effets indirects dus \u00e0 la production de m\u00e9diateurs cellulaires et isch\u00e9mie r\u00e9sultant de thromboses vasculaires.La pathogen\u00e8se n’est pas tr\u00e8s bien comprise chez les autres oiseaux.2.6 Diagnostic<\/strong>
    \n2.6.1 Signes cliniques<\/strong>
    \nChez les oiseaux, l’influenza aviaire provoque toute une vari\u00e9t\u00e9 de signes cliniques qui peuvent toucher les syst\u00e8mes respiratoire, digestif, reproducteur ou nerveux. Les signes cliniques de l’IAFP chez les galliformes sont g\u00e9n\u00e9ralement l\u00e9gers et comprennent :<\/div>\n
      \n
    • une diminution de la consommation de nourriture;<\/li>\n
    • l’entassement, la d\u00e9pression, la fermeture des yeux;<\/li>\n
    • des signes respiratoires (toux et \u00e9ternuements);<\/li>\n
    • et la baisse de la production d’\u0153ufs.<\/li>\n<\/ul>\n

      Les signes les plus souvent observ\u00e9s chez les galliformes atteints d’IAHP sont les suivants :<\/p>\n

        \n
      • mort subite;<\/li>\n
      • d\u00e9pression marqu\u00e9e avec \u00e9bouriffage des plumes;<\/li>\n
      • diminution de la consommation de nourriture;<\/li>\n
      • soif excessive;<\/li>\n
      • baisse ou arr\u00eat de la production d’\u0153ufs;<\/li>\n
      • d\u00e9tresse respiratoire l\u00e9g\u00e8re \u00e0 grave (notamment toux, \u00e9ternuements, larmoiements excessifs);<\/li>\n
      • \u0153d\u00e8mes \u00e0 la caroncule et \u00e0 la cr\u00eate et diarrh\u00e9e aqueuse verd\u00e2tre.<\/li>\n<\/ul>\n

        Les signes neurologiques, peu fr\u00e9quents chez les galliformes, comprennent notamment un manque de coordination et l’incapacit\u00e9 \u00e0 marcher et \u00e0 se tenir debout.<\/p>\n

        Aucun signe clinique n’est associ\u00e9 \u00e0 l’IAFP chez les ans\u00e9riformes. En g\u00e9n\u00e9ral, les canards et les oies sont plus r\u00e9sistants \u00e0 l’infection par le virus de l’IA. Toutefois, les signes cliniques suivants ont \u00e9t\u00e9 signal\u00e9s chez des ans\u00e9riformes durant l’\u00e9closion d’ IADOHP associ\u00e9e \u00e0 la souche H7N1 survenue en Italie (1999) et durant l’\u00e9closion d’IAHP associ\u00e9e \u00e0 la souche asiatique H5N1 :<\/p>\n

          \n
        • mort subite;<\/li>\n
        • signes nerveux (manque de coordination, incapacit\u00e9 \u00e0 marcher et \u00e0 se tenir debout);<\/li>\n
        • dyspn\u00e9e, d\u00e9pression et diarrh\u00e9e.<\/li>\n<\/ul>\n

           <\/p>\n

          Les connaissances sur la pathogen\u00e8se et la dynamique de la souche asiatique H5N1 chez les ans\u00e9riformes domestiques sont en constante \u00e9volution. Toutefois, les connaissances actuelles sur la souche asiatique H5N1 incitent la communaut\u00e9 scientifique \u00e0 penser que le virus serait plus pathog\u00e8ne pour les oies et qu’il causerait une infection silencieuse chez les canards. Par cons\u00e9quent, les canards seraient une source plus probable de diss\u00e9mination du virus de la souche asiatique H5N1 chez les populations d’oiseaux domestiques et sauvages. Les oiseaux affect\u00e9s peuvent pr\u00e9senter une ou plusieurs combinaisons des signes cliniques. Dans certains cas d’IAHP, la maladie est si aigu\u00eb que l’on retrouve les oiseaux morts, sans avoir observ\u00e9 d’autres signes.<\/p>\n

          2.6.2 L\u00e9sions pathologiques macroscopiques<\/strong>
          \nL’emplacement anatomique et la gravit\u00e9 des l\u00e9sions observ\u00e9es chez plusieurs esp\u00e8ces aviaires sensibles sont extr\u00eamement variables et d\u00e9pendent principalement de l’esp\u00e8ce et de la pathog\u00e9nicit\u00e9 de la souche virale. Souvent, on observe peu de l\u00e9sions importantes lorsque la maladie est b\u00e9nigne, et dans le cas de virus hautement pathog\u00e8nes, il peut n’y avoir aucune l\u00e9sion manifeste car les oiseaux meurent rapidement avant que des changements ne puissent se produire.<\/p>\n

          Les signes les plus couramment observ\u00e9s chez les galliformes contamin\u00e9s par l’IAFP sont l’\u00e9coulement nasal, la sinusite et les \u0153ufs \u00e0 la coquille rugueuse et mal form\u00e9e. Les sacs a\u00e9riens peuvent \u00eatre \u00e9paissis et couverts d’exsudat cas\u00e9eux ou fibrineux. Les reins peuvent \u00eatre fortement congestionn\u00e9s et des d\u00e9p\u00f4ts blancs d’urate (caus\u00e9s par la d\u00e9shydratation) sont habituellement observ\u00e9s dans les tubules. Les galliformes qui meurent de la maladie suraigu\u00eb ou aigu\u00eb (IAHP, y compris la souche asiatique H5N1) peuvent ne pas pr\u00e9senter de signes importants, si ce n’est ceux associ\u00e9s \u00e0 une congestion musculaire g\u00e9n\u00e9rale et \u00e0 la d\u00e9shydratation. Dans les cas moins s\u00e9v\u00e8res, les l\u00e9sions macroscopiques sont plus typiques et g\u00e9n\u00e9ralement pr\u00e9sentes. Un \u0153d\u00e8me sous-cutan\u00e9 de la t\u00eate et de la r\u00e9gion du cou avec un exsudat s\u00e9reux appara\u00eet lorsque la peau est relev\u00e9e. Un fluide s\u00e9ro-fibrineux peut suinter des narines et du bec lorsque les oiseaux sont install\u00e9s pour l’autopsie. Des h\u00e9morragies dans diverses parties du corps sont courantes et particuli\u00e8rement frappantes dans la sous-muqueuse du proventricule et du g\u00e9sier. La membrane muqueuse du g\u00e9sier p\u00e8le facilement et on observe des h\u00e9morragies dans la r\u00e9gion sous-muqueuse. La muqueuse intestinale peut pr\u00e9senter des h\u00e9morragies, surtout au niveau des sous-muqueux. On peut \u00e9galement observer des p\u00e9t\u00e9chies dans le c\u0153ur, sur les parois intestinales, sur le p\u00e9ritoine, dans le tissu adipeux et dans le br\u00e9chet. Des h\u00e9morragies dans la conjonctive entra\u00eenent une congestion s\u00e9v\u00e8re. La trach\u00e9e peut \u00eatre \u0153d\u00e9mateuse, h\u00e9morragique et remplie d’un exc\u00e8s de mucus. Chez les pondeuses, on peut voir sur les ovaires des d\u00e9g\u00e9n\u00e9rescences, des h\u00e9morragies et des taches noires de n\u00e9crose. La cavit\u00e9 p\u00e9riton\u00e9ale est g\u00e9n\u00e9ralement remplie de vitellus provenant des \u0153ufs bris\u00e9s, ce qui provoque une a\u00e9rosacculite et une p\u00e9ritonite s\u00e9v\u00e8re.<\/p>\n

          Il n’y a pas de l\u00e9sions macroscopiques associ\u00e9es \u00e0 l’IAFP chez les ans\u00e9riformes. Les signes et les l\u00e9sions macroscopiques suivants ont \u00e9t\u00e9 signal\u00e9s chez les ans\u00e9riformes infect\u00e9s par la souche asiatique H5N1 : \u00e9coulement oculaire et nasal, conjonctivite, p\u00e9t\u00e9chies et ecchymoses des pattes et des pieds, \u00e9panchement s\u00e9reux entourant le c\u0153ur, le pancr\u00e9as, le foie et l’abdomen, cyanose de la cavit\u00e9 buccale, pneumonie, marbrures pancr\u00e9atiques, spl\u00e9nom\u00e9galie, atrophie des bourses et du thymus, foyers malaciques au niveau des h\u00e9misph\u00e8res c\u00e9r\u00e9braux.<\/p>\n

          2.6.3 Morbidit\u00e9 et mortalit\u00e9<\/strong>
          \nLa morbidit\u00e9 et la mortalit\u00e9 de la maladie sont variables, tout comme les signes cliniques, car elles d\u00e9pendent de nombreux facteurs :<\/p>\n

            \n
          • l’esp\u00e8ce;<\/li>\n
          • l’\u00e2ge;<\/li>\n
          • la sensibilit\u00e9 de l’h\u00f4te;<\/li>\n
          • la pathog\u00e9nicit\u00e9 du virus;<\/li>\n
          • la pr\u00e9sence d’une maladie concomitante;<\/li>\n
          • la gestion de l’exploitation.<\/li>\n<\/ul>\n

            Toutefois, dans le cas de l’IAHP, la morbidit\u00e9 et la mortalit\u00e9 peuvent atteindre un taux de 100 % chez les galliformes.<\/p>\n

            2.6.4 Diagnostic de laboratoire<\/strong>
            \nUn diagnostic provisoire de l’IA est possible si le v\u00e9t\u00e9rinaire enqu\u00eateur obtient une anamn\u00e8se d\u00e9taill\u00e9e du propri\u00e9taire et observe avec attention les signes cliniques et les l\u00e9sions \u00e0 l’autopsie. La pr\u00e9sence d’un large \u00e9ventail de signes cliniques rend le diagnostic clinique difficile, sauf en cas d’\u00e9pizootie de l’IAHP. Lors d’une enqu\u00eate initiale sur l’IA, l’id\u00e9al est d’obtenir un isolat du virus pouvant \u00eatre pleinement caract\u00e9ris\u00e9, mais ce n’est pas toujours possible. On peut alors avoir recours \u00e0 une combinaison d’autres \u00e9preuves comme l’\u00e9preuve de transcription inverse coupl\u00e9e \u00e0 l’amplification en cha\u00eene par polym\u00e9rase en temps r\u00e9el (RRT-PCR), le s\u00e9quen\u00e7age et des analyses s\u00e9rologiques pour caract\u00e9riser le virus autant que possible.<\/p>\n

            Le diagnostic d’IADO peut \u00eatre \u00e9tabli, aux fins d’une intervention imm\u00e9diate sur le terrain, par un laboratoire approuv\u00e9 par le R\u00e9seau canadien de surveillance zoosanitaire (RCSZ), c’est-\u00e0-dire l’un des laboratoires du R\u00e9seau des laboratoires de d\u00e9pistage de l’influenza aviaire (RL-IA). Ces laboratoires sont accr\u00e9dit\u00e9s par le Centre national des maladies animales exotiques (CNMAE) pour la r\u00e9alisation d’\u00e9preuves de d\u00e9pistage de l’IA pour le compte de l’ACIA. Les r\u00e9sultats des \u00e9preuves effectu\u00e9es par les laboratoires du RL-IA doivent \u00eatre communiqu\u00e9s conform\u00e9ment au plan de communication convenu. Tous les \u00e9chantillons pour lesquels le r\u00e9sultat est positif dans un laboratoire du RL-IA doivent \u00eatre transmis au CNMAE qui se charge d’effectuer les \u00e9preuves de confirmation, conform\u00e9ment \u00e0 l’accord international. Le CNMAE est le laboratoire de r\u00e9f\u00e9rence canadien en mati\u00e8re d’IA (LR-IA).<\/p>\n

            Voici les \u00e9preuves de laboratoire servant au d\u00e9pistage de l’influenza aviaire qui sont disponibles au Canada.<\/p>\n

            Isolement du virus \u2013 Indique une infection active<\/strong><\/p>\n

            L’isolement et l’identification du virus de l’IA d’\u00e9chantillons d’\u00e9couvillonnages trach\u00e9aux ou cloacaux, de mati\u00e8res f\u00e9cales ou d’organes internes offre l’approche diagnostique par excellence. Pour l’isolement du virus, il faut pr\u00e9lever des \u00e9chantillons sur plusieurs oiseaux et les transmettre au laboratoire, car il n’est pas rare que de nombreux \u00e9chantillons ne produisent pas le virus. Des \u0153ufs de poule embryonn\u00e9s sont inocul\u00e9s avec des \u00e9chantillons provenant d’\u00e9couvillonnages ou de tissus dans un diluant viral. En r\u00e8gle g\u00e9n\u00e9rale, le virus de l’IA tue les embryons dans un d\u00e9lai de 48 \u00e0 72 heures. Toutefois, la confirmation d’un r\u00e9sultat n\u00e9gatif chez des \u0153ufs inocul\u00e9s peut prendre jusqu’\u00e0 14 jours, comme le prescrit la m\u00e9thode de laboratoire. On analyse le liquide chorio-allanto\u00efde de l’\u0153uf des embryons morts afin de d\u00e9celer la pr\u00e9sence d’une activit\u00e9 h\u00e9magglutinine (H) \u00e0 l’aide d’\u00e9rythrocytes de poulet. Il importe de d\u00e9terminer si l’activit\u00e9 h\u00e9magglutinine (H) dans ce liquide est provoqu\u00e9e par le virus de l’influenza ou par d’autres virus h\u00e9magglutinants comme le virus de la maladie de Newcastle (VMN). Une batterie de tests visant \u00e0 confirmer l’identit\u00e9 du virus et la sp\u00e9cificit\u00e9 du type peut \u00e9galement \u00eatre r\u00e9alis\u00e9e. Une fois qu’un virus de l’IA est isol\u00e9 et qu’on \u00e9tablit qu’il poss\u00e8de un antig\u00e8ne H5 ou H7, un indice de pathog\u00e9nicit\u00e9 intraveineuse est \u00e9tabli afin d’\u00e9valuer sa virulence. Par ailleurs, on proc\u00e9dera au typage mol\u00e9culaire du pathotype par RRT-PCR et par s\u00e9quen\u00e7age des acides nucl\u00e9iques.<\/p>\n

            \u00c9preuves de diagnostic mol\u00e9culaire rapides \u2013 Indiquent une infection active<\/strong><\/p>\n

            Ces \u00e9preuves comprennent la RRT-PCR pour la d\u00e9tection matricielle du virus de l’IA et de l’ARN des sous-types H5 et H7. Les \u00e9chantillons requis doivent provenir d’\u00e9couvillonnages oropharyng\u00e9s, et cloacaux, ainsi que de tissus. L’\u00e9preuve par RRT-PCR peut \u00e9galement \u00eatre effectu\u00e9e sur le liquide allanto\u00efque durant l’isolement du virus. La technique n\u00e9cessite au plus trois heures pour un \u00e9chantillon individuel; cependant, pour des \u00e9chantillons multiples, il faut pr\u00e9voir une journ\u00e9e (24 heures) entre le moment o\u00f9 le laboratoire re\u00e7oit les \u00e9chantillons et le moment o\u00f9 il peut fournir les r\u00e9sultats.<\/p>\n

            \u00c9preuves de capture d’antig\u00e8ne \u2013 Indiquent une infection active; ces \u00e9preuves sont utilis\u00e9es sur le terrain en cas d’\u00e9closion.<\/strong><\/p>\n

            Les \u00e9chantillons requis doivent provenir d’\u00e9couvillonnages oropharyng\u00e9s et cloacaux. Ces \u00e9preuves sont surtout utiles lorsqu’il y a des oiseaux cliniquement malades (phase aigu\u00eb de la maladie). Les \u00e9preuves de capture d’antig\u00e8ne suivantes ne sont con\u00e7ues que pour la d\u00e9tection de l’influenza de type A et peuvent donner \u00e0 la fois des r\u00e9sultats faussement positifs et des r\u00e9sultats faussement n\u00e9gatifs :<\/p>\n

            Directigen Flu;
            \nFlu Detect (pas encore disponible au Canada).
            \nCes \u00e9preuves devront faire l’objet d’une \u00e9valuation pouss\u00e9e par la Centre canadien des produits biologiques v\u00e9t\u00e9rinaires (CCPBV) et le CNMAE, car leur utilit\u00e9 en cas d’\u00e9closion reste encore \u00e0 d\u00e9terminer.<\/p>\n

            \u00c9preuves s\u00e9rologiques \u2013 Indiquent une infection ant\u00e9rieure.<\/strong><\/p>\n

            Les \u00e9preuves s\u00e9rologiques sont utilis\u00e9es pour d\u00e9montrer la pr\u00e9sence d’anticorps susceptibles d’\u00eatre d\u00e9cel\u00e9s dans les cinq \u00e0 sept jours qui suivent l’infection. Des \u00e9chantillons de s\u00e9rum sont n\u00e9cessaires pour ces \u00e9preuves. Toutefois, des travaux sont en cours pour valider l’utilisation d’\u00e9chantillons de jaune d’\u0153uf pour des \u00e9preuves immunoenzymatique (ELISA). Les techniques les plus courantes sont les \u00e9preuves de l’inhibition de l’h\u00e9magglutination (IH) visant \u00e0 d\u00e9celer les anticorps dirig\u00e9s contre l’antig\u00e8ne h\u00e9magglutinine et l’immunodiffusion double pour d\u00e9celer les anticorps dirig\u00e9s contre la nucl\u00e9oprot\u00e9ine (NP). Les autres \u00e9preuves s\u00e9rologiques utilis\u00e9es pour d\u00e9celer les anticorps sont la s\u00e9roneutralisation virale (SN) et l’inhibition de la neuraminidase (IN).<\/p>\n

            Dans les programmes de surveillance s\u00e9rologique, la d\u00e9tection des anticorps anti-NP est la m\u00e9thode g\u00e9n\u00e9ralement utilis\u00e9e, car elle permet de d\u00e9celer les anticorps dirig\u00e9s contre un antig\u00e8ne \u00e0 r\u00e9action crois\u00e9e commun \u00e0 tous les virus de type A de l’influenza. Toutefois, il importe de se montrer prudent, car la r\u00e9action immunitaire varie beaucoup parmi les diff\u00e9rentes esp\u00e8ces aviaires. Voici les \u00e9preuves s\u00e9rologiques qui sont utilis\u00e9es :<\/p>\n

            ELISA par comp\u00e9tition (C-ELISA) pour la d\u00e9tection d’anticorps dirig\u00e9s contre l’influenza de type A. (Cette \u00e9preuve prend une journ\u00e9e.) Trousse C-ELISA commerciale pour la d\u00e9tection des anticorps dirig\u00e9s contre l’influenza de type A. Ces \u00e9preuves, qui ne sont pas recommand\u00e9es pour les esp\u00e8ces autres que les galliformes, prennent une journ\u00e9e. Elles sont disponibles au Canada, mais leur utilisation n’est pas approuv\u00e9e pour les laboratoires du RCSZ.
            \n\u00c9preuve d’immunodiffusion en g\u00e9lose (IDG) pour la d\u00e9tection des anticorps dirig\u00e9s contre l’influenza de type A. Cette \u00e9preuve n’est pas recommand\u00e9e pour les ans\u00e9riformes, car ces derniers produisent peu de pr\u00e9cipitines. Cette \u00e9preuve prend une journ\u00e9e.
            \nIH pour la d\u00e9tection des anticorps propres au sous-type. Cette \u00e9preuve prend deux jours. On peut aussi l’utiliser pour l’identification du virus dans le liquide allanto\u00efdien.<\/p>\n

            2.6.5 Diagnostics diff\u00e9rentiels<\/strong>
            \nSelon le tableau clinique et l’esp\u00e8ce affect\u00e9e, les diagnostics diff\u00e9rentiels doivent inclure les maladies syst\u00e9miques dans le cas de l’IAHP et les maladies respiratoires dans le cas de l’IAFP. L’IAHP peut ressembler au chol\u00e9ra aviaire aigu (Pasteurella spp.), \u00e0 la maladie de Newcastle forme v\u00e9log\u00e8ne visc\u00e9rotrope (c.\u00e0.d. paramyxovirus, PMV-1) ou \u00e0 une intoxication (alimentaire, hydrique). Dans les formes les moins s\u00e9v\u00e8res de l’IA, on peut confondre la maladie avec d’autres maladies respiratoires virales courantes comme la bronchite infectieuse, la laryngotrach\u00e9ite infectieuse et les infections \u00e0 paramyxovirus aviaires. Des infections bact\u00e9riennes (Mycoplasma spp., coryza [Haemophylus paragallinarum], Ornythobacterium spp., Bordetella avium et chol\u00e9ra aviaire) et des infections fongiques (Aspergillus spp.) doivent \u00e9galement figurer dans les diagnostics diff\u00e9rentiels dans le cas d’une maladie respiratoire. Des infections concomitantes caus\u00e9es par d’autres virus d’influenza et des mycoplasmes ou d’autres bact\u00e9ries sont courantes.<\/p>\n

            2.7 Immunit\u00e9<\/strong>
            \n2.7.1 Active<\/strong>
            \nL’infection par des virus de l’IA, l’exposition \u00e0 ces virus et l’immunisation au moyen de vaccins stimulent la production d’anticorps tant par les muqueuses que par l’organisme entier. La production syst\u00e9mique d’immunoglobine M dans les cinq jours qui suivent l’infection est rapidement suivie par la production d’immunoglobine G. L’intensit\u00e9 de la r\u00e9ponse immunitaire varie selon l’esp\u00e8ce d’oiseau et diminue dans l’ordre suivant :<\/p>\n

              \n
            • poulet;<\/li>\n
            • faisan;<\/li>\n
            • dindon;<\/li>\n
            • caille;<\/li>\n
            • canard.<\/li>\n<\/ul>\n

              Les anticorps dirig\u00e9s contre les prot\u00e9ines de surface sont neutralisants et protecteurs. La protection est associ\u00e9e principalement aux anticorps dirig\u00e9s contre la prot\u00e9ine AH. Toutefois, les anticorps dirig\u00e9s contre la prot\u00e9ine AH et\/ou la prot\u00e9ine AN pr\u00e9viennent les signes cliniques et la mort \u00e0 la suite d’une provocation par des virus de l’IAHP de sous-types AH ou AN homologues. Le degr\u00e9 de protection contre l’infection des muqueuses et l’excr\u00e9tion subs\u00e9quente du virus pathog\u00e8ne peut d\u00e9pendre du degr\u00e9 de similarit\u00e9 de la s\u00e9quence de la prot\u00e9ine AH du virus vaccinal et du virus auquel l’animal est expos\u00e9. La dur\u00e9e de la protection varie et d\u00e9pend de nombreux facteurs, mais chez les pondeuses, on a d\u00e9montr\u00e9 que la protection contre les signes cliniques et la mort dure au moins 30 semaines apr\u00e8s une seule dose de vaccin.<\/p>\n

              La r\u00e9ponse immunitaire contre les prot\u00e9ines internes ne semble pas pr\u00e9venir les signes cliniques ou la mort. Par contre, elle peut r\u00e9duire la p\u00e9riode de multiplication du virus et, par cons\u00e9quent, son excr\u00e9tion.<\/p>\n

              2.7.2 Passive<\/strong>
              \nOn n’a fait \u00e9tat d’aucune \u00e9tude sur la protection par les anticorps maternels contre des prot\u00e9ines AH ou AN homologues. Toutefois, \u00e0 la lumi\u00e8re de l’information disponible sur d’autres maladies aviaires virales, on pense qu’une protection contre les signes cliniques et la mort en cas de provocation par un virus homologue de l’IA est probable durant les deux premi\u00e8res semaines apr\u00e8s l’\u00e9closion. Aux fins de la surveillance, l’OIE consid\u00e8re que les anticorps maternels dans un troupeau reproducteur vaccin\u00e9 sont g\u00e9n\u00e9ralement pr\u00e9sents dans le vitellus et peuvent persister dans la prog\u00e9niture pendant une p\u00e9riode pouvant atteindre quatre semaines.<\/p>\n

              2.7.3 Vaccination<\/strong>
              \nL’approche modernis\u00e9e adopt\u00e9e par l’OIE et le milieu scientifique concernant la vaccination contre l’IA rend plus acceptable le recours aux vaccins. La vaccination a \u00e9t\u00e9 utilis\u00e9e pour diverses esp\u00e8ces de volaille et son efficacit\u00e9 pour la pr\u00e9vention des signes cliniques et de la mortalit\u00e9 est bien document\u00e9e. Les pays d\u00e9velopp\u00e9s devraient viser l’\u00e9radication sans recours aux vaccins en cas d’\u00e9closion d’ IADO. Toutefois, dans le cadre de la pr\u00e9paration \u00e0 une \u00e9closion de la maladie, les pays devraient \u00e9tablir \u00e0 l’avance les sources disponibles de vaccins contre l’IADO.<\/p>\n

              2.8 Sant\u00e9 publique<\/strong>
              \nLes virus de l’IA peuvent contribuer \u00e0 l’\u00e9mergence de nouvelles souches mammaliennes \u00e0 la suite d’un r\u00e9assortiment g\u00e9n\u00e9tique \u2013 caract\u00e9ristique des virus de l’influenza de type A. Une transmission directe de virus de l’IA entre des esp\u00e8ces aviaires et des humains s’est produite dans le cas de la souche asiatique H5N1 de l’IAHP et celui de la souche H7N7 aux Pays-Bas. Certaines donn\u00e9es semblent indiquer que le virus de l’influenza du porc (H1N1) pourrait \u00eatre en cause dans la transmission intersp\u00e9cifique. Il se pourrait donc qu’une association porc-volaille-humain ait une incidence sur la sant\u00e9 publique.<\/p>\n

              Les virus de l’IA pourraient jouer un r\u00f4le important dans l’apparition de nouvelles souches virales de l’influenza humaine en apportant des g\u00e8nes viraux aux souches humaines par r\u00e9assortiment g\u00e9n\u00e9tique. La possibilit\u00e9 que les virus aviaires et mammaliens infectent les humains est r\u00e9elle en raison du r\u00e9assortiment et de mutations subs\u00e9quentes chez les virus de l’influenza.<\/p>\n

              Pour cette raison, les enqu\u00eates men\u00e9es en cas d’\u00e9closions possibles de l’IADO exigent le port d’un \u00e9quipement de protection individuel (\u00c9PI) aux fins de la pr\u00e9vention de zoonoses.<\/p>\n

              \n

              Politique de cr\u00e9dits d\u2019images<\/strong><\/em><\/p>\n

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              Source: Ces informations sont une gracieuset\u00e9 du Dr Corina Lupu M.V. de L’h\u00f4pital v\u00e9t\u00e9rinaire pour oiseaux et animaux exotiques 6090 Sherbrooke ouest,Montr\u00e9al,Qu\u00e9bec H4R 1Y1 http:\/\/www.birdandexoticvet.com\/ Maladies du syst\u00e8me digestif : Avalure ou Boulimie L’oiseau mange sans arr\u00eat maigri tr\u00e8s vite, le plumage est h\u00e9riss\u00e9. Causes : Sevrage pr\u00e9matur\u00e9. Parasites (poux rouges). H\u00e9patite L’oiseau atteint d’h\u00e9patite […]<\/p>\n","protected":false},"author":86,"featured_media":18994,"comment_status":"open","ping_status":"open","sticky":false,"template":"","format":"standard","meta":{"_acf_changed":false,"om_disable_all_campaigns":false,"_monsterinsights_skip_tracking":false,"footnotes":""},"categories":[1780],"tags":[],"villes":[],"class_list":["post-8722","post","type-post","status-publish","format-standard","has-post-thumbnail","hentry","category-sante-bien-etrecomportement-et-alimentation"],"acf":[],"_links":{"self":[{"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/posts\/8722","targetHints":{"allow":["GET"]}}],"collection":[{"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/posts"}],"about":[{"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/types\/post"}],"author":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/users\/86"}],"replies":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/comments?post=8722"}],"version-history":[{"count":0,"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/posts\/8722\/revisions"}],"wp:featuredmedia":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/media\/18994"}],"wp:attachment":[{"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/media?parent=8722"}],"wp:term":[{"taxonomy":"category","embeddable":true,"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/categories?post=8722"},{"taxonomy":"post_tag","embeddable":true,"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/tags?post=8722"},{"taxonomy":"villes","embeddable":true,"href":"https:\/\/www.perroquetsecours.com\/en\/wp-json\/wp\/v2\/villes?post=8722"}],"curies":[{"name":"wp","href":"https:\/\/api.w.org\/{rel}","templated":true}]}}